导航：安全管理网>> 安全论文>> 食品安全论文>>正文

纳米金比色法在食品安全检测中的应用研究进展

文档作者：白文荟, 刘金钏, 陈爱亮文档来源：中国农业科学院农业质量标准与检测技术研究所		点击数：	更新时间： 2025年06月30日
下载地址：点击这里	文件大小： 669.69 KB 共8页	文档格式： PDF	下载点数： 1 点（VIP免费）

全屏查看

内容预览 [文件共8页]

本文件共8页，如需编辑使用，请下载。

注：预览效果可能会出现部分文字乱码（如口口口）、内容显示不全等问题，下载是正常的。

	文件大小：669.69 KB 共8页文件格式：PDF 下载点数：1 点（VIP会员免费）

上一篇：农产品质量管理体系的现状和发展

文本预览

仅提取页面文字内容，供快速阅读使用。

第5 卷 第7 期 食品安全质量检测学报 Vol. 5 No. 7
2014 年7 月 Journal of Food Safety and Quality Jul. , 2014
基金项目: 国家国际科技合作专项(2012DFA31140)
Fund: Supported by International Science &amp;amp; Technology Cooperation Program of China (2012DFA31140)
*通讯作者: 陈爱亮, 副研究员, 主要研究方向为食品安全检测。E-mail: ailiang.chen@gmail.com
*Corresponding author: CHEN Ai-Liang, Associate Professor, Institute of Quality Standard &amp;amp; Testing Technology for Agro-Products, Chinese
Academy of Agricultural Sciences, No.12, Zhongguancun South Street, Beijing 100081, China. E-mail: ailiang.chen@gmail.com
纳米金比色法在食品安全检测中的应用研究进展
白文荟, 刘金钏, 陈爱亮*
(中国农业科学院农业质量标准与检测技术研究所, 北京 100081)
摘要: 纳米金粒子具有独特的物理、化学特性及较好的生物相容性, 是目前现有的纳米材料中应用和研究最
多的材料之一, 其在诸多领域如生物传感器、表面电化学分析、免疫分析、药物传递以及治疗等方面都具有广
阔的应用前景。纳米金具有极高的消光系数和强烈的粒子间距效应, 其在分散状态下呈红色, 变为交联团聚状
态后呈蓝色, 依据该特性建立了各种各样的纳米金比色快速检测方法。由于纳米金比色法具有操作简便、成本
低廉、结果肉眼可见且灵敏度较高等优点, 近年来在分析化学尤其是快速检测领域发展迅速, 许多影响食品安
全的有害物质可通过直接或间接作用影响纳米金的聚合状态, 从而使纳米金比色法在食品安全检测中的应用
成为可能。本文综述了纳米金比色法的原理及其在食品安全各类污染物中的检测应用, 并总结了该方法面临的
问题, 提出了将来的发展方向。
关键词: 纳米金; 比色法; 快速检测; 食品安全
Gold nanoparticle based colorimetry and its application in rapid detection
for food safety
BAI Wen-Hui, LIU Jin-Chuan, CHEN Ai-Liang*
(Institute of Quality Standards and Testing Technology for Agro-products, Chinese Academy of Agricultural Sciences,
Beijing 100081, China)
ABSTRACT: Gold nanoparticle has particular physical and chemical properties as well as good biocompatibility,
which has become one of the most applied and studied nanomaterials. It has been widely used in many
fields such as electrochemical biosensor, surface chemical analysis, immunoassay, drug delivery, and therapy,
etc. Gold nanoparticle has strong size-dependent surface plasmon resonance absorption and can take a color
change from red to blue when the dispersed nanoparticles are aggregated. Various biosensing approaches have
been designed based on the target which could induce gold nanoparticle solution color changes. Recently gold
nanoparticles based colorimetric detection methods developed rapidly especially in rapid detection field with
simple operation, low cost, visual results and high sensitivity. Many food chemical contaminants can interact
with gold nanoparticles directly or indirectly resulting a color change of gold nanoparticle solution, which
make it possible for colorimetric methods based on gold nanoparticles to apply in food safety detection. The
recent developments of gold nanoparticle based colorimetric biosensing assays for food safety have been reviewed
and the direction for future research were discussed and proposed.
KEY WORDS: gold nanoparticles; colorimetry; rapid detection; food safety
1944 食品安全质量检测学报 第5 卷
1 纳米金比色法原理
相比于荧光、发光、电化学等检测方法, 比色法具有
结果肉眼可见、无需复杂仪器测量、非常适合于现场测定
和实时测定的优点, 因此一直是分析化学领域里的热点研
究方向。纳米金作为生物分析化学中应用最为广泛的标记
纳米材料, 具有极高的消光系数(比普通有机染料高3 个数
量级)和强烈的粒子间距效应, 其在分散状态或粒径较小
时(10∼50 nm)呈红色, 在520 nm 左右呈现特征的光吸收,
发生团聚或粒径变大后逐渐转变为紫色或蓝色, 吸收峰右
移, 520 nm 光吸收降低而600∼700 nm 的光吸收增强(图1)。
反之纳米金从团聚状态或粒径较大变为分散状态或粒径较
小时也可以由紫色/蓝色变为红色, 吸收峰左移[1-2]。通过肉
眼观测或测量吸收光谱的变化可以对纳米金变色程度进行
测定, 利用这一性质建立的纳米金比色法的灵敏度可以达
到荧光法的灵敏度[2-3]。目前纳米金比色法的原理主要有两
种(图1): 第一种是去保护法, 即先用适配体或其他修饰分
子保护纳米金, 使其在高盐浓度下保持分散状态, 溶液呈
红色, 当加入待检靶标时, 靶标与保护分子结合, 失去保
护的纳米金溶液在高盐浓度下团聚变蓝; 第二种是交联法,
即选择或设计合成能同时与靶标两个及两个以上位点特异
结合的修饰分子修饰纳米金, 当加入靶标时, 不同纳米金
上的修饰分子通过与靶标发生反应而把纳米金交联到一起,
使溶液颜色变蓝。当然除了上述两种常见的比色原理之外,
还可以通过靶标控制纳米金还原合成[4-5](颜色从无到红)或
纳米金消蚀[6-8](颜色由红变淡)等方法来实现纳米金比色检
测。纳米金比色法操作简单, 反应速度快, 近十年来围绕纳
米金开发了各种各样的比色检测方法, 被广泛用于分析细
胞[9-10]、蛋白质[11-12]、DNA[13-14]、金属离子[15-17]、小分子
[18-19]等。本文综述了该方法在抗生素、农药、违禁添加物、
生物毒素、重金属以及其他污染物等食品安全检测中的应
用研究进展。
2 纳米金比色法在食品安全检测中的应用
2.1 抗生素残留
适配体作为一种单链DNA 分子, 可以吸附在纳米金
表面, 保护纳米金免于高盐引起的纳米金团聚[14]。当加入
对应的靶标时, 适配体与靶标结合, 从纳米金上解离, 失
去保护的纳米金在高盐浓度下发生团聚, 溶液颜色由红
变为紫色或蓝色, 而且颜色的变化与加入靶标的浓度成
正比, 可用于很多种物质的检测。目前已经筛选了多种抗
生素的适配体, 利用这一方法相继建立了磺胺二甲氧嘧
啶[20]、青霉素[21]、卡那霉素[22]、氧四环素[23]、链霉素[24]、
氯霉素等抗生素的检测方法。本课题组建立的磺胺二甲氧
嘧啶检测灵敏度可以达到50 ng/mL, 低于国家规定最低
残留限量[20]。Song 等[21]建立的基于青霉素适配体的纳米
金比色法检测牛奶中的青霉素最低检测限可以达到10
ng/mL。Zhou 等[24]筛选了链霉素适配体并建立了相应的
纳米金比色法, 检测实际样品蜂蜜中的链霉素, 线性范
围达到0.2∼1.2 μmol/L。
Sun 等[25]利用巯基乙酸修饰纳米金表面, 由于巯基乙
酸与链霉素之间较强的静电作用, 一个链霉素分子可以
与两个纳米金颗粒上的不同巯基乙酸分子结合, 因此向
巯基乙酸修饰的纳米金溶液中加入链霉素时, 链霉素可
以诱导纳米金交联发生团聚现象, 溶液的颜色由红变蓝,
根据颜色变化程度或吸收光谱的变化达到定量测定链霉
素的目的。
2.2 农药残留
乙酰胆碱酯酶可以催化硫代乙酰胆碱(acetyl thiocholine)
生成硫代胆碱(thiocholine), 硫代胆碱则可以通过巯基
共价与纳米金结合, 引起纳米金颗粒交联团聚, 使纳米金
图1 两种主要纳米金比色法原理及其吸收光谱变化示意图
Fig. 1 The illustration of principle of gold nanoparticles based colorimetric methods (A) and absorption spectrum diagram change (B)
第7 期 白文荟, 等: 纳米金比色法在食品安全检测中的应用研究进展 1945
溶液颜色由红变蓝。当加入有机磷农药时, 由于其可以抑
制乙酰胆碱酯酶的活性, 从而抑制纳米金溶液颜色的变化,
根据抑制的程度即可以测定样品中的有机磷农药含量。通
过优化测试条件, 纳米金522 nm 的吸光度值与甲胺磷在
0.02∼1.42 μg/mL 范围内成线性关系, 检测灵敏度达到1.40
ng/mL, 并且该方法被成功用于蔬菜中甲胺磷的检测[26]。
二硫代氨基甲酸酯杀虫剂由于巯基的存在可以直接
和纳米金发生共价反应引起纳米金颗粒交联, 根据纳米金
溶液变色程度可以直接测定样品中二硫代氨基甲酸酯杀虫
剂的含量。结合样品净化预浓缩步骤, 检测灵敏度达到
μg/L 水平, 回收率在81.0%∼94.0% 之间, 精确度在
5.6%∼8.9%之间, 重复性约为9%[27]。纳米银和纳米金具有
相似的性质, 只是特征吸收光谱不同, Li 等[28]利用纳米银
取代纳米金, 利用上述原理建立了有机磷农药敌百虫的检
测方法, 灵敏度可以达到0.18 ng/mL, 线性范围为
0.25∼37.5 ng/mL。Rastegarzadeh 等[4]利用福美双可以抑制
抗坏血酸还原氯金酸生成纳米金的原理建立了一种基于纳
米金的福美双检测方法, 体系中福美双越多, 生成的纳米
金越少颜色越浅。该方法检测福美双线性范围为
2.0×10-7∼1.0×10-5 mol/L, 灵敏度为1.7×10-7 mol/L。
2.3 违禁添加物
近年来, 三聚氰胺和瘦肉精等违禁药物成为了我国
畜禽产品的主要安全问题因素, 因此也迫切需要建立这两
类物质的简单快速灵敏的检测方法。目前已建立了数种基
于纳米金比色的三聚氰胺检测方法。 由于三聚氰胺具有三
个氨基基团, 可以与纳米金表面的柠檬酸根离子结合, 从
而直接诱导纳米金发生团聚, 溶液颜色由红变蓝。因此通
过简单的样品提取, 利用纳米金溶液直接测定牛奶样品中
的三聚氰胺, 灵敏度可以达到0.05 mg/L[29], 且其他带氨基
物质如氨基酸、乳糖、半乳糖以及常见掺假物质如葡萄糖、
尿素、福尔马林、过氧化氢、蔗糖、硝酸盐等均不会引起
纳米金团聚变蓝, 具有很好的特异性。向该体系中加入
NaHSO4 促进柠檬酸与三聚氰胺的反应, 使检测奶中的三
聚氰胺灵敏度达到25 ng/mL[30]。Chen 等[19]利用氢硼化物
还原法制备纳米金, 然后加入三聚氰胺, 其外环的氨基可
以和纳米金表面的氯金酸根离子高亲和力结合, 诱导纳米
金发生团聚, 其灵敏度比用柠檬酸还原法制备的纳米金灵
敏度高1000 倍, 检测婴幼儿配方奶粉中的三聚氰胺, 灵敏
度可以达到2.0×10-7 g/L[19]。除了利用上面未修饰的纳米金
直接检测三聚氰胺外, 还可以选择能够和三聚氰胺的外环
氨基发生特异反应的其他分子修饰纳米金, 以增加检测的
特异性和灵敏度。例如Liang 等[31-32]用巯基乙胺修饰纳米
金, 加入三聚氰胺时, 在酸性条件下纳米金表面带正电荷
的氨基与三聚氰胺发生静电结合, 从而使纳米金发生交联
团聚, 达到检测三聚氰胺的目的。利用该方法检测三聚氰
胺比直接用未修饰的柠檬酸保护的纳米金的灵敏度高100
倍以上。检测牛奶、鸡蛋以及饲料中的三聚氰胺灵敏度可
以达到1 mg/L, 线性范围为1∼200 mg/L[32]。除了利用巯基
乙胺外, 还可以用巯基乙酸[33]、吡啶-3-硼酸[34]、3-巯基-1-
丙磺酸钠盐[35]等与三聚氰胺的氨基基团间能够发生静电
或氢键结合的分子修饰纳米金, 当加入三聚氰胺时, 可以
引起纳米金团聚, 使溶液颜色由红变蓝, 从而达到检测三
聚氰胺的目的。
除了三聚氰胺, 利用同样的原理也可以设计纳米金
比色法用来检测瘦肉精等β-激动剂类药物。Zhou 等[36]用
三聚氰胺修饰纳米金, 通过莱克多巴胺和沙丁胺醇与三聚
氰胺修饰的纳米金氢键结合, 使纳米金发生交联团聚, 颜
色由红色变为蓝色。利用该方法, 通过测定A670 nm/A520 nm
吸光度比值, 检测灵敏度可以达到1×10−11 mol/L, 而且具
有较宽的线性范围, 其中检测莱克多巴胺和沙丁胺醇的线
性范围分别为1×10−10∼5×10−7 mol/L 和 1×10−10∼1×10−5
mol/L。同样利用该方法也可以检测克伦特罗[37], 通过测定
吸光度比值, 线性范围可以达到2.8×10−10∼2.8×10−7 mol/L,
检测限为2.8×10−11 mol/L (S/N=3), 其他可能的共存干扰物
如 Tdl-epinephrine、苯基丙氨酸、色氨酸、阿拉明、尿酸
等都对该方法没有影响[38]。除了目标物交联修饰的纳米金
之外, He 等[5]发现β-激动剂苯环具有氨基或酚羟基, 因此
可以直接用来还原氯金酸生成金原子, 而金原子再进一步
形成纳米金, 导致在528 nm 处具有特征性的光吸收峰。
528 nm 的光吸收值与β-激动剂含量成正比, 因此也可以用
来检测β-激动剂类药物。
2.4 生物毒素
赭曲霉毒素A 是广泛存在于谷物、豆类、干果、咖啡、
畜禽等产品中的一种霉菌毒素。Yang 等[18]利用赭曲霉毒素
A的单链DNA适配体保护纳米金, 使其在高盐浓度下保持
红色, 当加入赭曲霉毒素A 时, 适配体与赭曲霉毒素A 结
合, 失去保护的纳米金发生团聚现象, 溶液由红色变为蓝
色。利用该方法可以低至20 nmol/L 的赭曲霉毒素A, 线性
范围从 20∼625 nmol/L。国内江南大学王文凤等[38]建立了
基于纳米金-适配体技术检测伏马菌素B1 的新方法, 首先
在纳米金表面组装巯基化的适配体互补短链DNA1/FB1-适
配体复合物; 当加入目标物时, 适配体链与目标物结合,
与互补短链DNA1 发生解离; 此时再加入纳米金标记的与
适配体互补短链1 互补的短链DNA2, 二者杂交可导致纳
米金粒子的聚集而使溶液颜色发生变化, 进而实现目标物
的可视化检测。方法检测线性范围为125~1500 ng/L, 检测
限为125 ng/L, 该方法已成功应用于啤酒中FB1 的检测。
栾云霞等[39]建立了基于非标记的黄曲霉毒素B1(AFB1)特
异性结合适配体, 针对AFB1 的灵敏快速可视化检测方法,
具有良好的灵敏度和特异性,线性范围和检测限分别是
0.025~10 ng/mL 和0.025 ng/mL。肉毒神经毒素被认为是目
前最毒的食源性毒素之一, 被列为生物反恐重要的生物毒
1946 食品安全质量检测学报 第5 卷
素目标, 建立一种简单快速灵敏准确的检测方法具有重要
的意义。除了单链DNA 可以保护纳米金以外, 在纳米金表
面修饰一层蛋白也可以保护纳米金免于高盐浓度下的纳米
金团聚[40]。Halliwell 等[41]将肉毒神经毒素的底物突触相关
蛋白25(synaptosomal-associated protein 25, SNAP-25)通过
其自带半胱氨酸的与纳米金通过共价键偶联, 使得纳米金
在一定盐浓度下保持分散状态, 然后向体系中加入肉毒毒
素A, 水解切掉纳米金表面SNAP-25 的C 端肽段, 降低对
纳米金的保护, 在一定盐浓度下纳米金溶液从红色变为蓝
色, 利用该方法可以检测低至373 fg/mL 的肉毒神经毒素。
Liu 等[42]则利用肉毒神经毒素A 轻链可以特异水解底物突
触相关蛋白25 的原理, 设计了一段含有肉毒神经毒素A轻
链识别/酶切位点的多肽序列, 一端通过巯基偶联到纳米
金上, 另一端修饰生物素, 和亲和素修饰的纳米金进行结
合, 从而使纳米金团聚; 或者将该多肽序列两端同时修饰
上生物素, 加入到含亲和素修饰的纳米金中, 使纳米金交
联团聚, 溶液成为蓝色; 检测时向其中加入肉毒神经毒素
A 轻链, 多肽被水解, 交联的纳米金被打开成分散状态,
溶液的颜色从蓝色变为红色, 从而达到检测肉毒神经毒素
A 的目的, 检测限从0.1~5 nmol/L。
2.5 重金属
利用纳米金比色法已经建立了多种重金属的检测方
法。其中仅针对汞就建立了多达40 多种方法, 这些检测方
法主要包括两大类: 一类是基于汞能够同时和两个胸腺嘧
啶T 发生特异性的强配位结合[43], 从而设计各种基于含T
的寡核苷酸探针的检测方法: 设计含T 的寡核苷酸双链分
别共价偶联到不同的纳米金上, 加入汞时不同纳米金上的
含T 寡核苷酸探针通过与汞结合形成互补杂交的状态, 诱
导纳米金交联团聚变蓝[44-45]; 或设计末端为T 的互补双链
共价结合到相同纳米金上, 通过结合汞, 末端闭合, 诱导
纳米金从分散状态变为团聚状态[46]或从团聚状态变为分
散状态[47]; 或直接通过静电吸附到未修饰的纳米金上, 加
入汞后含T 寡核苷酸探针从纳米金上解离, 使失去保护的
纳米金溶液变蓝[48-54]。另外一类即是选取其他类似胸腺嘧
啶等能够和汞进行多结合的物质修饰纳米金, 当加入汞离
子时, 汞离子通过同时和不同纳米金上修饰分子结合引发
纳米金交联, 使溶液颜色发生变化, 这些修饰物包括寡肽
[55]、L-半胱氨酸[56-57]、胸腺嘧啶[58]、巯基烷酸[59-60]、二硫
赤藓糖醇[61]、多聚谷氨酸[62]; 或是汞离子和修饰分子反应
后使其从纳米金表面解离, 从而使纳米金从分散状态变为
团聚状态或从团聚状态变为分散状态, 这些修饰物有季铵
基[63]、3-硝基-1,2,4-三氮唑[64]、4,4-联吡啶或吡啶[65-66]、铋
试剂[67]等。除了上面这两类主要的检测方法之外, 还有很
多大体原理相似的汞的检测方法, 如2014 年, Sener 等[68]
建立了一种基于赖氨酸诱导的吸附有汞离子的纳米金团聚
的汞离子检测方法, 灵敏度可以达到2.9 nmol/L。国内詹深
山等[69]综述了国内外基于纳米金和核酸适配体的重金属
离子传感器的研究进展。更多基于纳米金的汞离子检测方
法可参考Du 等2013 年的综述文章[70]。
除了汞之外, 利用纳米金比色法还建立了其他元素
如铅、铬、镉、砷等的检测方法。Chai 等[71]采用可以和铅
特异结合的谷胱甘肽修饰纳米金, 加入铅离子时, 一个铅
离子同时结合两个纳米金上的两个谷胱甘肽分子, 从而引
起纳米金交联, 使纳米金溶液的颜色由红变蓝, 达到检测
铅离子的目的, 灵敏度可以达到100 nmol/L。基于同样的
原理, Li 等[72]用Podand triazole 修饰纳米金建立了检测铅
离子的检测方法。Chen 等[16]基于纳米金比色法设计了一种
非常灵敏的检测方法, 其首先用14 nm 的纳米金与硫代硫
酸钠反应生成Au(S2O3)2
3-, 然后加入铅离子和2-巯基乙醇,
形成的铅-金复合物加速了纳米金的溶解和金-巯基乙醇复
合物的形成, 使得纳米金的表面等离子共振迅速降低。该
体系检测铅离子灵敏度可以达到0.5 nmol/L, 比其他离子
至少要高1000 倍, 线性范围达到4 个数量级 (2.5 nmol/L~
10 μmol/L)。目前铬的污染也愈来愈严重, Zhao 等[73]合成
一种能够和铬螯合的特异分子BP-DTC 并将其修饰在纳米
金上, 体系中有三价铬的状态下, 铬可以和不同纳米金上
的修饰分子BP-DTC 结合, 引发纳米金交联, 使得纳米金
颜色由红变蓝, 达到检测铬的目的, 灵敏度达到31 ng/mL,
而且还可以用于四价铬的检测。Xu 等[74]利用酒石酸盐修
饰的纳米银建立了类似地检测三价铬的方法。
Kalluri 等[75]分别利用谷胱甘肽、二硫苏糖醇和半胱氨
酸三种能够和砷特异结合的分子修饰纳米金, 当加入砷时,
位于不同纳米金上的修饰分子同时与砷结合, 引起纳米金
交联, 且交联程度随砷浓度增加而加深, 溶液颜色由红变
蓝, 该方法可检测低至0.1 ng/mL 的三价或四价砷。利用单
链DNA 能够保护纳米金免于高盐引起的团聚原理,
Liang[76]和Wu 等[77]建立了两种分别基于砷特异性富含GT
序列寡核苷酸或适配体的纳米金比色法, 灵敏度分别达到
2 ng/mL 和5 ng/mL。Xue 等[78]也利用巯基烟酸和半胱氨酸
修饰纳米金用于镉离子的检测, 线性范围为 2.0×
10−7∼1.7×10−6mol/L, 灵敏度为1.0×10−7mol/L。
2.6 病原微生物
理论上检测DNA 的纳米金比色法都可以用来检测病
原微生物。由于单双链DNA 在纳米金表面吸附状态不同,
单链DNA 可以保护纳米金免于在高盐浓度时发生团聚现
象, 因此利用不对称PCR 扩增病原微生物的特异核酸序列,
扩增产生单链DNA 产物, 即可以实现利用纳米金比色法
检测的目的。如果是共价偶联到纳米金上, 则双链可以保
护纳米金免于在高盐浓度时发生团聚现象, 而单链不能,
因此利用单双链对纳米金保护的不同建立了多种病原微生
物的检测方法。如Deng 等[13]利用不对称PCR 扩增炭疽杆
菌基因组DNA, 产生的单链产物和偶联到不同纳米金上
第7 期 白文荟, 等: 纳米金比色法在食品安全检测中的应用研究进展 1947
两段探针杂交, 从而引发纳米金交联团聚, 溶液颜色变蓝。
接着Deng 等[79]又利用不对称PCR 扩增的炭疽杆菌基因组
DNA, 生成的单链DNA 直接吸附到纳米金上, 加入一定
浓度盐时可以保护纳米金不发生团聚。Jung 等[80]利用其中
一条末端修饰巯基的引物进行PCR 扩增衣原体的基因组
DNA, 在衣原体存在的情况下, 扩增的双链产物通过巯基
偶联结合纳米金上保护纳米金在高盐浓度下处于分散状态,
而没有扩增产物的时候, 只是单链巯基引物结合到纳米金
上, 在高盐浓度下发生团聚, 溶液变蓝。基于同样的比色原
理Fu 等[81]利用等温扩增PCR-纳米金比色法方法建立了单
增李斯特菌的检测方法, 最低可达75 个细菌拷贝。
除了利用PCR 扩增微生物基因组检测DNA 方法建立
纳米金比色法之外, 还可以利用特异结合分子修饰纳米金,
加入微生物细胞时, 纳米金聚集微生物表面, 使纳米金溶
液的颜色从红色变为蓝色。常用的修饰分子有针对细胞表
面抗原的抗体或适配体, 该方法已经被用来检测癌细胞
[9-82]。Chang 等[83]利用该原理建立了检测金葡菌的方法, 不
过为了增加灵敏度采用了测定光散射和磁珠放大的方法,
最终达到单细胞的测定。Wang 等[84]将针对沙门氏菌细胞
表面抗原的抗体偶联到纳米金上, 然后与细菌细胞一起孵
育, 随着沙门氏菌细胞数量的增多, 聚集的纳米金也越多,
从而使纳米金溶液变为蓝色, 1000 个细胞即可引起明显的
颜色变化。
2.7 其他污染物
近年来, 环境中的含氟化合物及其在食品中的污染
愈来愈成为食品安全关注的对象。Sun 等[85]先用巯基吡啶
通过Au-S 键修饰纳米金, 然后再用APTMS 进行硅烷化处
理, 在纳米金表面形成一层Si-O-Si 的保护层, 当向其中加
入含氟化合物时, 氟离子和硅结合, 破坏保护层, 不同纳
米金颗粒通过暴露的吡啶形成NHF 氢键, 导致纳米金发
生交联团聚, 溶液的颜色由红变蓝, 从而达到检测氟化
物的目的, 肉眼观察可检测低至1 μg/mL 的氟化物。Niu
等[86]分别用末端有巯基的聚乙二醇和全氟烷烃分别修饰
纳米金, 建立了一种检测全氟化合物的纳米金比色法。当
加入全氟化合物时, 全氟化合物和纳米金上全氟烷烃因
为氟氟的相互作用而使纳米金交联团聚, 最终导致纳米
金沉淀溶液颜色变浅, 利用该方法检测全氟化合物灵敏
度可以达到10 μg/L。
食品腐败产生的亚硝酸盐有致癌作用。Xiao 等[87]用
邻氨基苯硫醇修饰纳米金, 在存在亚硝酸根离子的情况下
加热溶在乙醇中的纳米金, 纳米金表面发生脱氨反应, 电
荷减少, 纳米金发生团聚, 溶液颜色变蓝, 变色程度随亚
硝酸盐浓度增加而加深, 该方法可在10 min 内检测低至1
μg/mL 的亚硝酸盐。Daniel 等[88]利用亚硝酸根可以偶联磺
胺和萘二胺的经典格里斯反应, 分别合成苯胺和萘修饰的
纳米金, 当加入亚硝酸根时, 诱导纳米金交联凝聚, 溶液
颜色变蓝, 该方法灵敏度满足美国EPA 规定的环境水中1
μg/mL 的检测要求。为了避免对纳米金的修饰, Zhang 等[89]
利用亚硝酸盐和苯二胺的重氮化反应建立了基于纳米金比
色法的亚硝酸盐检测方法, 在没有亚硝酸盐存在的情况下,
苯二胺诱导纳米金聚集, 而在亚硝酸盐和磷酸存在的情况
下, 亚硝酸盐将苯二胺的氨基重氮化, 减弱了其对纳米金
的聚集效应, 使纳米金溶液保持红色, 达到检测亚硝酸盐
的目的, 可检测低于1 μg/mL 的亚硝酸盐。
3 总结与展望
以上综述了纳米金比色法的原理及其在食品安全各
类污染物检测中的应用, 可以看出基于纳米金的各种检测
方法大部分都离不开检测目标物的特异分子, 以满足检测
方法的特异性。其中基于适配体的检测方法, 由于适配体
与靶分子基于构象结合, 具有和抗体相似的特异性, 因此
保证了检测方法的特异性; 而基于氢键或电荷结合而设计
的各种修饰分子则可能会因为结构类似物的存在而发生一
定的非特异反应, 使得检测方法的特异性不足。因此要提
高纳米金比色法的特异性, 还需要进一步在修饰分子的设
计上下功夫, 一方面筛选各种污染物的高亲和力高特异性
适配体, 一方面设计尽可能多氢键或电荷结合的特异修饰
分子。
纳米金比色法虽然具有很高的灵敏度, 但是这种灵
敏度有时候也受到所使用的修饰分子或适配体亲和力的限
制, 使得在某些灵敏度要求较高的情况下, 纳米金比色法
的灵敏度不能满足要求, 因此开发基于纳米金比色法的信
号放大研究具有重要的意义。纳米金作为一种纳米材料具
有过氧化物酶的性质, 在H2O2 存在的情况下, 可以像
ELISA那样催化四甲基联苯胺生成蓝色产物, 在652 nm 处
产生特定吸收峰, 因此可以利用纳米金的该性质建立基于
纳米金比色法的信号放大方法。如Su 等[90]利用巯基苯硼
酸修饰的纳米金-铂结合到E. coli O157:H7 细菌表面, 然后
加入底物TMB 和H2O2, 通过测定652 nm 波长的吸收测定
样品中的E. coli O157:H7 数量, 线性范围为7∼6×106
cfu/mL, 检测限为7 cfu/mL。
当然除了特异性和灵敏度之外, 纳米金比色法本身
的缺点也比较明显, 作为一种胶体溶液, 容易受到基质
环境离子强度等影响而发生团聚变色, 因此利用纳米金
比色法检测食品安全污染物, 一方面需要在样品前处理
方面多下功夫, 尽可能地去除可能的干扰物; 另一方面
应尽量采用特异修饰分子纳米金, 目标物与修饰特异结
合引发纳米金交联的方法, 以避免其他因素引起的纳米
金团聚。总之, 纳米金比色法具有其他方法不可比拟的简
单快捷、无需复杂仪器等优点, 而且灵敏度较高, 因此在
快速检测领域尤其是食品安全快速筛查领域具有非常广
阔的应用前景。
1948 食品安全质量检测学报 第5 卷
参考文献
[1] Ghosh SK, Pal T. Interparticle coupling effect on the surface plasmon resonance
of gold nanoparticles: from theory to applications [J]. Chem Rev,
2007, 107(11): 4797-4862.
[2] Zhao W, Brook MA, Li Y. Design of gold nanoparticle-based colorimetric
biosensingassays [J]. Chem Biochem, 2008, 9(15): 2363-2371.
[3] Liu J, Lu Y. Adenosine-dependent assembly of aptazyme-functionalized
gold nanoparticles and its application as a colorimetric biosensor [J]. Anal
Chem, 2004, 76(6): 1627-1632.
[4] Rastegarzadeh S, Abdali S. Colorimetric determination of thiram based on
formation of gold nanoparticles using ascorbic acid [J]. Talanta, 2013, 104:
22-26.
[5] He P, Shen L, Liu R, et al. Direct detection of beta-agonists by use of gold
nanoparticle-based colorimetric assays [J]. Anal Chem, 2011, 83(18):
6988-6995.
[6] Liu R, Chen Z, Wang S, et al. Colorimetric sensing of copper(II) based on
catalytic etching of gold nanoparticles [J]. Talanta, 2013, 112: 37-42.
[7] Liu JM, Jiao L, Lin LP, et al. Non-aggregation based label free colorimetric
sensor for the detection of Cu2+ based on catalyzing etching of gold
nanorods by dissolve oxygen [J]. Talanta, 2013, 117: 425-430.
[8] Chen Z, Zhang Z, Qu C, et al. Highly sensitive label-free colorimetric
sensing of nitrite based on etching of gold nanorods [J]. Analyst, 2012,
137(22): 5197-5200.
[9] Lu W, Arumugam SR, Senapati D, et al. Multifunctional oval-shaped
gold-nanoparticle-based selective detection of breast cancer cells using
simple colorimetric and highly sensitive two-photon scattering assay [J].
ACS Nano, 2010, 4(3): 1739-1749.
[10] Medley CD, Smith JE, Tang Z, et al. Gold nanoparticle-based colorimetric
assay for the direct detection of cancerous cells [J]. Anal Chem, 2008,
80(4): 1067-1072.
[11] Kim BH, Yoon IS, Lee JS. Masking nanoparticle surfaces for sensitive and
selective colorimetric detection of proteins [J]. Anal Chem, 2013, 85(21):
10542-10548.
[12] Ou LJ, Jin PY, Chu X, et al. Sensitive and visual detection of sequence-
specific DNA-binding protein via a gold nanoparticle-based colorimetric
biosensor[J]. Anal Chem, 2010, 82(14): 6015-6024.
[13] Deng H, Xu Y, Liu Y, et al. Gold nanoparticles with asymmetric polymerase
chain reaction for colorimetric detection of DNA sequence [J]. Anal
Chem, 2012, 84(3): 1253-1258.
[14] Li H, Rothberg L. Colorimetric detection of DNA sequences based on
electrostatic interactions with unmodified gold nanoparticles [J]. Proc Natl
Acad Sci USA, 2004, 101(39): 14036-14039.
[15] Niu X, Xu D, Yang Y, et al. Ultrasensitive colorimetric detection of Cu(2+)
using gold nanorods [J]. Analyst, 2014, 139(11): 2691-2694.
[16] Chen YY, Chang HT, Shiang YC, et al. Colorimetric assay for lead ions
based on the leaching of gold nanoparticles [J]. Anal Chem, 2009, 81(22):
9433-9439.
[17] Lin CY, Yu CJ, Lin YH, et al. Colorimetric sensing of silver(I) and mercury(
II) ions based on an assembly of Tween 20-stabilized gold nanoparticles
[J]. Anal Chem, 2010, 82(16): 6830-6837.
[18] Yang C, Wang Y, Marty JL, et al. Aptamer-based colorimetric biosensing
of Ochratoxin A using unmodified gold nanoparticles indicator [J]. Biosens
Bioelectron, 2011, 26(5): 2724-2727.
[19] Chen W, Deng HH, Hong L, et al. Bare gold nanoparticles as facile and
sensitive colorimetric probe for melamine detection [J]. Analyst, 2012,
137(22): 5382-5386.
[20] Chen A, Jiang, X, Zhang, W, et al. High sensitive rapid visual detection of
sulfadimethoxine by label-free aptasensor [J]. Biosens Bioelectron, 2013,
42: 419-425.
[21] Song KM, Jeong E, Jeon W, et al. Aptasensor for ampicillin using gold
nanoparticle based dual fluorescence-colorimetric methods [J]. Anal Bioanal
Chem, 2012, 402(6): 2153-2161.
[22] Song KM, Cho M, Jo H, et al. Gold nanoparticle-based colorimetric detection
of kanamycin using a DNA aptamer [J]. Anal Biochem, 2011, 415(2):
175-181.
[23] Kim YS, Kim JH, Kim IA, et al. A novel colorimetric aptasensor using
gold nanoparticle for a highly sensitive and specific detection of oxytetracycline
[J]. Biosens Bioelectron, 2010, 26(4): 1644-1649.
[24] Zhou N, Wang J, Zhang J, et al. Selection and identification of streptomycin-
specific single-stranded DNA aptamers and the application in the detection
of streptomycin in honey [J]. Talanta, 2013, 108: 109-116.
[25] Sun J, Ge J, Liu W, et al. Highly sensitive and selective colorimetric visualization
of streptomycin in raw milk using Au nanoparticles supramolecular
assembly [J]. Chem Commun (Camb), 2011, 47(35): 9888-9890.
[26] Li H, Guo J, Ping H, et al. Visual detection of organophosphorus pesticides
represented by mathamidophos using Au nanoparticles as colorimetric
probe [J]. Talanta, 2011, 87: 93-99.
[27] Giannoulis KM, Giokas DL, Tsogas GZ, et al. Ligand-free gold nanoparticles
as colorimetric probes for the non-destructive determination of total
dithiocarbamate pesticides after solid phase extraction [J]. Talanta, 2014,
119: 276-283.
[28] Li Z, Wang Y, Ni YN, et al. Unmodified silver nanoparticles for rapid
analysis of the organophosphorus pesticide, dipterex, often found in different
waters [J]. Sensors and Actuators B-Chemical, 2014, 193: 205-211.
[29] Kumar N, Seth R, Kumar H. Colorimetric detection of melamine in milk
by citrate-stabilized gold nanoparticles [J]. Anal Biochem, 2014.
[30] Chi H, Liu B, Guan G, et al. A simple, reliable and sensitive colorimetric
visualization of melamine in milk by unmodified gold nanoparticles [J].
Analyst, 2010, 135(5): 1070-1075.
[31] Ma Y, Jiang L, Mei Y, et al. Colorimetric sensing strategy for mercury(II)
and melamine utilizing cysteamine-modified gold nanoparticles [J]. Analyst,
2013, 138(18): 5338-5343.
[32] Liang X, Wei H, Cui Z, et al. Colorimetric detection of melamine in complex
matrices based on cysteamine-modified gold nanoparticles [J]. Analyst,
2011, 136(1): 179-183.
[33] Shen SF, Zhao HW, Xu D, et al. Colorimetric assay of melamine based on
the aggregation of gold nanoparticles [J]. J Biomed Nanotechnol, 2011,
7(5): 691-695.
[34] Wu Z, Zhao H, Xue Y, et al. Colorimetric determination of melamine by
pyridine-3-boronic acid modified gold nanoparticles [J]. J Nanosci Nanotechnol,
2012, 12(3): 2412-2416.
[35] Su H, Fan H, Ai S, et al. Selective determination of melamine in milk
samples using 3-mercapto-1-propanesulfonate-modified gold nanoparticles
as colorimetric probe [J]. Talanta, 2011, 85(3): 1338-1343.
[36] Zhou Y, Wang P, Su X, et al. Colorimetric detection of ractopamine and
第7 期 白文荟, 等: 纳米金比色法在食品安全检测中的应用研究进展 1949
salbutamol using gold nanoparticles functionalized with melamine as a
probe [J]. Talanta, 2013, 112: 20-25.
[37] Zhang X, Zhao H, Xue Y, et al. Colorimetric sensing of clenbuterol using
gold nanoparticles in the presence of melamine [J]. Biosens Bioelectron,
2012, 34(1): 112-117.
[38] 王文凤, 吴世嘉, 马小媛, 等. 基于纳米金标记-适配体识别的伏马菌
素B1 检测新方法[J]. 食品与生物技术学报, 2013, 5(32): 501-508.
Wang WF, Wu SJ, Ma XY, et al. Novel Methods for Fumonisins B1 Detection
Based on AuNPs Labeling and Aptamer Recognition [J]. J Food Sci
Biotechnol, 2013, 5(32): 501-508.
[39] 栾云霞, 陈佳祎, 陆安祥, 等. 基于非标记核酸适配体可视化检测黄曲
霉毒素B1 的方法研究[J]. 食品安全质量检测学报, 2014, 5(3): 736-741.
Luan YX, Chen JY, Lu AX, et al. Colorimetric detection of aflatoxin B1
using aptamer-functionalized gold nanoparticles [J]. J Food Safe Qual,
2014, 5(3): 736-741.
[40] Dominguez-Medina S, Blankenburg J, Olson J, et al. Adsorption of a Protein
Monolayer via Hydrophobic Interactions Prevents Nanoparticle Aggregation
under Harsh Environmental Conditions [J]. ACS Sustain Chem
Eng, 2013, 1(7): 833-842.
[41] Halliwell J, Gwenin C. A label free colorimetric assay for the detection of
active botulinum neurotoxin type A by SNAP-25 conjugated colloidal gold
[J]. Toxins (Basel), 2013, 5(8): 1381-1391.
[42] Liu X, Wang Y, Chen P, et al. Biofunctionalized gold nanoparticles for colorimetric
sensing of botulinum neurotoxin A light chain [J]. Anal Chem,
2014, 86(5): 2345-2352.
[43] Tanaka Y, Oda S, Yamaguchi H, et al. 15N-15N J-coupling across Hg(II):
direct observation of Hg(II)-mediated T-T base pairs in a DNA duplex [J].
J Am Chem Soc, 2007, 129(2): 244-245.
[44] Lee JS, Han MS, Mirkin CA. Colorimetric detection of mercuric ion
(Hg2+) in aqueous media using DNA-functionalized gold nanoparticles [J].
Angew Chem Int Ed Eng, 2007, 46(22): 4093-4096.
[45] Xue X, Wang F, Liu X. One-step, room temperature, colorimetric detection
of mercury (Hg2+) using DNA/nanoparticle conjugates [J]. J Am Chem
Soc, 2008, 130(11): 3244-3245.
[46] Kanayama N, Takarada T, Maeda M. Rapid naked-eye detection of mercury
ions based on non-crosslinking aggregation of double-stranded
DNA-carrying gold nanoparticles [J]. Chem Commun (Camb), 2011, 47(7):
2077-2079.
[47] Wu J, Li L, Zhu D, et al. Colorimetric assay for mercury (II) based on
mercury-specific deoxyribonucleic acid-functionalized gold nanoparticles
[J]. Anal Chim Acta, 2011, 694(1-2): 115-119.
[48] Wang H, Wang Y, Jin J, et al. Gold nanoparticle-based colorimetric and
"turn-on" fluorescent probe for mercury(II) ions in aqueous solution [J].
Anal Chem, 2008, 80(23): 9021-9028.
[49] Li D, Wieckowska A, Willner I. Optical analysis of Hg2+ ions by oligonucleotide-
gold-nanoparticle hybrids and DNA-based machines [J]. Angew
Chem Int Ed Eng, 2008, 47(21): 3927-3931.
[50] Wang Y, Yang F, Yang X. Colorimetric biosensing of mercury(II) ion using
unmodified gold nanoparticle probes and thrombin-binding aptamer [J].
Biosens Bioelectron, 2010, 25(8): 1994-1998.
[51] Liu CW, Hsieh YT, Huang CC, et al. Detection of mercury(II) based on
Hg2+ -DNA complexes inducing the aggregation of gold nanoparticles [J].
Chem Commun (Camb), 2008, (19): 2242-2244.
[52] Li L, Li B, Qi Y, et al. Label-free aptamer-based colorimetric detection of
mercury ions in aqueous media using unmodified gold nanoparticles as
colorimetric probe [J]. Anal Bioanal Chem, 2009, 393(8): 2051-2057.
[53] Yu CJ, Cheng TL, Tseng WL. Effects of Mn2+ on oligonucleotide-gold
nanoparticle hybrids for colorimetric sensing of Hg2+ improving colorimetric
sensitivity and accelerating color change [J]. Biosens Bioelectron,
2009, 25(1): 204-210.
[54] Xu X, Wang J, Jiao K, et al. Colorimetric detection of mercury ion (Hg2+)
based on DNA oligonucleotides and unmodified gold nanoparticles sensing
system with a tunable detection range [J]. Biosens Bioelectron, 2009,
24(10): 3153-3158.
[55] Si S, Kotal A, Mandal TK. One-dimensional assembly of peptide-
functionalized gold nanoparticles: An approach toward mercury ion
sensing [J]. J Phys Chem C, 2007, 111(3): 1248-1255.
[56] Chai F, Wang C, Wang T, et al. L-cysteine functionalized gold nanoparticles
for the colorimetric detection of Hg2+ induced by ultraviolet light [J].
Nanotechnology, 2010, 21(2): 1-6.
[57] Yang W, Gooding JJ, He Z, et al. Fast colorimetric detection of copper
ions using L-cysteine functionalized gold nanoparticles [J]. J Nanosci Nanotechnol,
2007, 7(2): 712-716.
[58] Chen L, Lou T, Yu C, et al. N-1-(2-mercaptoethyl)thymine modification of
gold nanoparticles: a highly selective and sensitive colorimetric chemosensor
for Hg2+ [J]. Analyst, 2011, 136(22): 4770-4773.
[59] Kim YJ, Johnson RC, Hupp JT. Gold nanoparticle-based sensing of "spectroscopically
silent" heavy metal ions [J]. Nano Letters, 2001, 1(4):
165-167.
[60] Huang CC, Chang HT. Parameters for selective colorimetric sensing of
mercury(II) in aqueous solutions using mercaptopropionic acid-modified
gold nanoparticles [J]. Chem Commun (Camb), 2007, (12): 1215-1217.
[61] Kim YR, Mahajan RK, Kim JS, et al. Highly sensitive gold nanoparticle-
based colorimetric sensing of mercury(II) through simple ligand exchange
reaction in aqueous media [J]. ACS Appl Mater Interfaces, 2010,
2(1): 292-295.
[62] Guan H, Liu X, Wang W, et al. Direct colorimetric biosensing of mercury(
II) ion based on aggregation of poly-(gamma-glutamic acid)-
functionalized gold nanoparticles [J]. Spectrochim Acta A Mol Biomol
Spectrosc, 2014, 121: 527-532.
[63] Liu D, Qu W, Chen W, et al. Highly sensitive, colorimetric detection of
mercury(II) in aqueous media by quaternary ammonium group-capped
gold nanoparticles at room temperature [J]. Anal Chem, 2010, 82(23):
9606-9610.
[64] Chen X, Zu Y, Xie H, et al. Coordination of mercury(II) to gold nanoparticle
associated nitrotriazole towards sensitive colorimetric detection of
mercuric ion with a tunable dynamic range [J]. Analyst, 2011, 136(8):
1690-1696.
[65] Li Y, Wu P, Xu H, et al. Highly selective and sensitive visualizable detection
of Hg2+ based on anti-aggregation of gold nanoparticles [J]. Talanta,
2011, 84(2): 508-512.
[66] Yang X, Liu H, Xu J, et al. A simple and cost-effective sensing strategy of
mercury (II) based on analyte-inhibited aggregation of gold nanoparticles
[J]. Nanotechnology, 2011, 22(27): 275503.
[67] Duan J, Yang M, Lai Y, et al. A colorimetric and surface-enhanced Raman
scattering dual-signal sensor for Hg2+ based on Bismuthiol II-capped gold
1950 食品安全质量检测学报 第5 卷
nanoparticles [J]. Anal Chim Acta, 2012, 723: 88-93.
[68] Sener G, Uzun L, Denizli, A. Lysine-promoted colorimetric response of
gold nanoparticles: a simple assay for ultrasensitive mercury(II) detection
[J]. Anal Chem, 2014, 86(1): 514-520.
[69] 詹深山, 吴远根, 邱树毅, 等. 基于纳米金和核酸适配体的重金属离子
传感器研究进展[J]. 上海交通大学学报(农业科学版), 2012, 2(30): 1-7,
16.
Zhan SY, Wu YG, Qiu SY, et al. Progress on the gold nanoparticles and
aptamers based sensors for heavy metal ions detection [J]. J Shanghai
Jiaotong Univ (Agric Sci), 2012, 2(30): 1-7, 16.
[70] Du J, Jiang L, Shao Q, et al. Colorimetric detection of mercury ions based
on plasmonic nanoparticles [J]. Small, 2013, 9(9-10): 1467-1481.
[71] Chai F, Wang C, Wang T, et al. Colorimetric detection of Pb2+ using glutathione
functionalized gold nanoparticles [J]. ACS Appl Mater Interfaces,
2010, 2(5): 1466-1470.
[72] Li H, Zheng Q, Han C. Click synthesis of podand triazole-linked gold nanoparticles
as highly selective and sensitive colorimetric probes for lead(II)
ions[J]. Analyst, 2010, 135(6): 1360-1364.
[73] Zhao L, Jin Y, Yan Z, et al. Novel, highly selective detection of Cr(III) in
aqueous solution based on a gold nanoparticles colorimetric assay and its
application for determining Cr(VI) [J]. Anal Chim Acta, 2012, 731: 75-81.
[74] Xu Y, Dong Y, Jiang X, et al. Colorimetric detection of trivalent chromium
in aqueous solution using tartrate-capped silver nanoparticles as probe [J].
J Nanosci Nanotechnol, 2013, 13(10): 6820-6825.
[75] Kalluri JR, Arbneshi T, Khan SA, et al. Use of gold nanoparticles in a
simple colorimetric and ultrasensitive dynamic light scattering assay: selective
detection of arsenic in groundwater [J]. Angew Chem Int Ed Eng,
2009, 48(51): 9668-9671.
[76] Liang RP, Wang ZX, Zhang L, et al. Label-free colorimetric detection of
arsenite utilizing G-/T-rich oligonucleotides and unmodified Au nanoparticles
[J]. Chemistry, 2013, 19(16): 5029-5033.
[77] Wu Y, Zhan S, Wang F, et al. Cationic polymers and aptamers mediated
aggregation of gold nanoparticles for the colorimetric detection of arsenic(
III) in aqueous solution [J]. Chem Commun (Camb), 2012, 48(37):
4459-4461.
[78] Xue Y, Zhao H, Wu Z, et al. Colorimetric detection of Cd2+ using gold
nanoparticles cofunctionalized with 6-mercaptonicotinic acid and
L-cysteine [J]. Analyst, 2011, 136(18): 3725-3730.
[79] Deng H, Zhang X, Kumar A, et al. Long genomic DNA amplicons adsorption
onto unmodified gold nanoparticles for colorimetric detection of Bacillus
anthracis [J]. Chem Commun (Camb), 2013, 49(1): 51-53.
[80] Jung YL, Jung C, Parab H, et al. Direct colorimetric diagnosis of pathogen
infections by utilizing thiol-labeled PCR primers and unmodified gold nanoparticles
[J]. Biosens Bioelectron, 2010, 25(8): 1941-1946.
[81] Fu Z, Zhou X, Xing D. Sensitive colorimetric detection of Listeria monocytogenes
based on isothermal gene amplification and unmodified gold
nanoparticles [J]. Methods, 2013, 64(3): 260-266.
[82] Medley CD, Smith JE, Tang Z, et al. Gold nanoparticle-based colorimetric
assay for the direct detection of cancerous cells [J]. Analytical Chemistry,
2008, 80(4): 1067-1072.
[83] Chang YC, Yang CY, Sun RL, et al. Rapid single cell detection of Staphylococcus
aureus by aptamer-conjugated gold nanoparticles [J]. Sci Rep,
2013, 3: 1863.
[84] Wang S, Singh AK, Senapati D, et al. Rapid colorimetric identification and
targeted photothermal lysis of Salmonella bacteria by using bioconjugated
oval-shaped gold nanoparticles [J]. Chemistry, 2010, 16(19): 5600-5606.
[85] Sun JF, Liu R, Zhang ZM, et al. Incorporation of the fluoride induced SiO
bond cleavage and functionalized gold nanoparticle aggregation into one
colorimetric probe for highly specific and sensitive detection of fluoride
[J]. Anal Chim Acta, 2014, 820: 139-145.
[86] Niu H, Wang S, Zhou Z, et al. Sensitive Colorimetric Visualization of Perfluorinated
Compounds Using Poly(ethylene glycol) and Perfluorinated
Thiols Modified Gold Nanoparticles [J]. Anal Chem, 2014, 86(9):
4170-4177.
[87] Xiao N, Yu C. Rapid-response and highly sensitive noncross-linking colorimetric
nitrite sensor using 4-aminothiophenol modified gold nanorods [J].
Anal Chem, 2010, 82(9): 3659-3663.
[88] Daniel WL, Han MS, Lee JS, et al. Colorimetric nitrite and nitrate detection
with gold nanoparticle probes and kinetic end points [J]. J Am Chem
Soc, 2009, 131(18): 6362-6363.
[89] Zhang J, Yang C, Wang X, et al. Colorimetric recognition and sensing of
nitrite with unmodified gold nanoparticles based on a specific diazo reaction
with phenylenediamine [J]. Analyst, 2012, 137(14): 3286-3292.
[90] Su H, Zhao H, Qiao F, et al. Colorimetric detection of Escherichia coli
O157:H7 using functionalized Au@Pt nanoparticles as peroxidase mimetics
[J]. Analyst, 2013, 138(10): 3026-3031.
(责任编辑:赵静)
作者简介
白文荟, 硕士研究生, 主要研究方向
为食品质量安全快速检测技术。
E-mail: belle1997@sina.com
陈爱亮, 博士, 副研究员, 主要研究
方向为食品质量安全快速检测技术。
E-mail: ailiang.chen@gmail.com

网友评论 more

食品安全论文最新内容

06-30